慢病毒收毒及纯化 SOP 下载本文

慢病毒收毒及纯化标准操作细则

1. 目的:

规范慢病毒收毒及纯化标准操作程序

2. 范围:

适用于慢病毒收毒及纯化操作工序

3. 操作程序 3.1 器材准备

无菌10ml玻璃吸管、电动移液枪、50ml离心管,移液枪、各种枪头,1.5mL EP管、试管架,酒精灯、荧光显微镜、CO2培养箱、生物安全柜, 15ml超滤管、0.22μm滤膜、50mL无菌注射器、1mL无菌注

射器,离心机

3.2 溶液准备

OMEM培养基,1640培养基,FBS(gemini)

3.3 操作步骤

3.3.1收集转染后48小时的细胞上清液于一个50ml离心管中,并更换10mL新的1640培养基,72小时(从转染开始计时)后再收集一次,并混合到一起。

3.3.2 4000rpm,离心5分钟,用0.22μm滤膜过滤收集好的上清液到新的50ml离心管中。

3.3.3准备一个15ml的超滤管,将过滤收集的上清液,根据上清液毫升数,分批次加入超滤管中(每次大约加入5ml)进行离心,4000rpm,离心10-15分钟,根据具体情况调整离心时间。

3.3.4每离心完成一次后,把管底部的废液弃掉,再加入新的上清液继续离心,最后一次离心完后,超滤管中保留500ul左右的病毒液,然后用移液器反复吹悬超滤管中病毒液,转移到无菌的EP管中。 3.3.5收集重悬后的慢病毒浓缩液于1.5mL离心管中,并做好标记,以10000rpm离心5min,以进一步去除其他杂质颗粒。

3.3.6用一支2mL注射器收集离心后的上清液,用0.22μm滤膜过滤于另一支干净的1.5mL EP管中,做好标记。

3.3.7根据需要将过滤后的样品进行小体积(50μL或20μL)分装,保留部分样品~20μL用于滴度检测,并做好标记,贴好标签。填写入库记录,并将分装好的病毒进行入库,保存于-80℃冰箱。

3.4清场

3.4.1物品集中在废液桶中灭菌后清洗。

3.4.2操作室台面用75%酒精擦拭消毒后,开启紫外灯进行灭菌。