抗氧化酶(SOD、POD、CAT)活性测定方法 下载本文

抗氧化酶(SOD、POD、CAT)活性测定方法

一、 超氧化物歧化酶(SOD)活性测定(氮蓝四唑光化还原法) 1、试剂的配制

(1)0.05mol/L磷酸缓冲液(PBS,pH7.8):

A母液:0.2mol/L磷酸氢二钠溶液: 取Na2HPO4·12H2O(分子量358.14)71.7g; B母液:0.2mol/L磷酸二氢钠溶液:取NaH2PO4·2H2O(分子量156.01)31.2g。 分别用蒸馏水定容到1000ml。

0.05mol/L PBS(pH7.8)的配制:分别取A母液(Na2HPO4) 228.75ml,B母液(NaH2PO4) 21.25ml,用蒸馏水定容至1000ml。加入10gPVP(聚乙烯吡咯烷酮)

参考文献:李合生主编:植物生理生化实验原理和技术.高等教育出版社,2000:267~268。

(2)130mmol/L甲硫氨酸溶液:取1.399g Met用磷酸缓冲液(pH7.8)定容至100ml。网上说定容到100ML我也不懂。拜托

(3)100μmol/L EDTA-Na2溶液:取0.03721g EDTA-Na2用磷酸缓冲液定容至1000ml; (4)100μM核黄素溶液:取0.0075g核黄素用蒸馏水定容至100ml,避光保存,随用随配,并稀释10倍

(5)750μmol/L氮蓝四唑(NBT)溶液:称取0.06133g NBT用磷酸缓冲液定容至100ml避光保存;

酶液制备:取一定部位的植物叶片(视需要定,去叶脉)0.5g于预冷的研钵中,加2ml磷酸缓冲液在冰浴下研磨成浆,加缓冲液使终体积为10ml。取5ml于10000r/min下离心10min,上清液即为SOD粗提液。

提取酶液时如何保存;如果没有测完的需要放在4℃的冰箱里。 2、酶活性测定

2.显色反应 取试管(要求透明度好)5支,3支为样品测定管,1支为对照管,另外1支作为空白,按表39-1加入各溶液。

混匀后将空白管置暗处,其它各管于4000lx日光灯下反应20min(要求各管受光情况一致,反应室的温度高时时间可适当缩短,温度低时时间可适当延长)。

表39-1 各溶液加入量

试 剂(酶) 0.05mol/L磷酸缓冲液 130mmol/L Met溶液 750μmol/L NBT溶液 100μmol/L EDTA-Na2液 20μmol/L核黄素 酶 液 蒸馏水 总体积

加核黄素时记得要快并且要避光,

SOD活性测定与计算 至反应结束后,以不照光的作空白,分别测定其它各管560nm波长下的消光度值,已知SOD活性单位以抑制NBT光化还原的50%为一个酶活性单位表示。按下式计算SOD活性:

用量(ml) 1.5 0.3 0.3 0.3 0.3 0.05 0.25 3.0

终浓度(比色时)

13mmol 75μmol 10μmol 2.0μmol

空白和对照管加缓冲液代替

酶液

SOD总活性=

式中 SOD总活性以每克鲜重酶单位表示;比活力单位以酶单位/mg蛋白表示;

A0—照光对照管的消光度值; AS—样品管的消光度值; VT—样液总体积(ml); V1—测定时样品用量(ml); FW—样重(g);

蛋白质浓度单位为每克鲜重含蛋白毫克数(mg/g)。

用荧光灯20w照20min可以吗 不可以, 二、POD、CAT酶活性的测定

粗酶液制备同SOD。

1、 过氧化物酶(POD)活性测定(愈创木酚法)

(1)试剂配制:

100mmol/L磷酸缓冲液(pH6.0):分别取A母液(Na2HPO4 ) 61.5ml和B母液(NaH2PO4 ) 438.5ml混匀即为1000ml PBS(0.2M,pH6.0);

(2)反应混合液配制:

取50ml PBS(100mmM,pH6.0),加入28ul愈创木酚(2-甲氧基酚)加热搅拌溶解,冷

(A0?AS)?VTA0?0.5?FW?V1

却后加入19ul 30%的H2O2,混匀后保存于冰箱中备用。

(3)样品测定:

称取1g,放入预冷研钵,加适量磷酸缓冲液研磨至匀浆以4000r/min离心15min,上清液转入100ml容量瓶,用磷酸缓冲液定容至刻度,贮于冷处备用。

取试管3支,一支取3ml反应液并加入磷酸缓冲液1ml作调零,两支取3ml反应液并加入1ml酶液,立即计时,在470nm测定,酶隔30s读书一次。测一个样加一个,不要全部加上。(边加样边测定,测定前等待5秒,动作要快,如果慢的话,要保证每个样品从加好样到开始记时的时间相差不大)

(4)酶活性计算:以每min OD值变化(升高)0.01为1个酶活性单位(u)。 POD=(ΔA470×Vt)/(W×Vs×0.01×t) (u/g min)

ΔA470:为反应时间内吸光度的变化;W为样品鲜重(g);t为反应时间(min);Vt为提取酶液总体积;Vs为测定时取用酶液体积。 2、 过氧化氢酶(CAT)活性测定

(1)试剂配制:

0.2mol/L磷酸缓冲液(pH7.0):取A母液(Na2HPO4) 61.0 ml 和B母液(NaH2PO4) 39.0 ml混合后至100ml。(加1gPVP)

(2)反应液配制:吸取5.68ml 30%的H2O2(原液)稀释至1000ml,摇匀即可。 (3)样品测定:1.酶液提取:称取新鲜小麦叶片或其它植物组织0.5g置研钵中,加入2~3ml 4℃下预冷的pH7.0磷酸缓冲液和少量石英砂研磨成匀浆后,转入25ml容量瓶中,并用缓冲液冲洗研钵数次,合并冲洗液,并定容到刻度。混合均匀将量瓶置4℃冰箱中静置10min,取上部澄清液在4000rpm下离心15min,上清液即为过氧化氢酶粗提液。4℃下保存备用.

2.测定:取10ml试管3支,其中2支为样品测定管,1支为空白管(加入酶液后在沸水中煮沸5-10min,冷却之后加入H2O2测定吸光值),按表40-2顺序加入试剂。 表40-2 紫外吸收法测定H2O2样品液配置表 管 号 粗酶液(ml) pH7.8磷酸(ml) 蒸馏水(ml) S1 0.2 1.5 1.0 S2 0.2 1.5 1.0

S3 0.2 1.5 1.0

25℃预热后,逐管加入0.3ml 0.1mol/L的H2O2,每加完一管立即记时,并迅速倒入石英比色杯中,240nm下测定吸光度,每隔1min读数1次,共测4min,待3支管全部测定完后,按下式计算酶活性。

调零用磷酸缓冲液(pH=7.8)

3.结果计算:

以1min内A240减少0.1的酶量为1个酶活单位(u)。 过氧化氢酶活性(u/g/min)= A240×Vt/0.1×V1×t×FW 式中 A240 = AS0- (AS1+AS2)/2 AS0—加入煮死酶液的对照管吸光值;

AS1, AS2—样品管吸光值; Vt—粗酶提取液总体积(ml); V1—测定用粗酶液体积(ml); FW—样品鲜重(g);

0.1—A240每下降0.1为1个酶活单位(u); t—加过氧化氢到最后一次读数时间(min)

五、丙二醛含量的测定 1、试剂配制:

10%TCA:100g 三氯乙酸 → 1L

0.6%TBA:0.6g硫代巴比妥酸 ,加少量氢氧化钠(1mol/l)溶解 →用10%TCA定容100ml (避光)

1mol/l氢氧化钠;称4gNaOH用蒸馏水溶解定容100ml 3、 测定步骤:

称取剪碎的试材1g,加入2ml 10%TCA和少量石英砂,研磨至匀浆,再加8ml TCA进一步

研磨,匀浆离心(4000r)离心10min,上清液为样品提取液。

3. 显色反应和测定 吸取离心的上清液2ml(对照加2ml蒸馏水),加入2ml 0.6%TBA溶液,混匀物于沸水浴上反应15min,迅速冷却后再离心。取上清液测定532nm、600nm和450nm波长下的消光度。

(2) 双组分分光光度法 按公式③可直接求得植物样品提取液中MDA的浓度。 用上述任一方法求得MDA的浓度,根据植物组织的重量计算测定样品中MDA的含量:

MDA(μmol/g FW)=

C2(umol/L)=6.45*(D532-D600)-0.56*D450 C2-为MDA的浓度;

D450、D532、D600分别代表450nm、532nm和600nm波长下的消光度值。 七、可溶性蛋白含量的测定(考马斯亮蓝染色法)

1、试剂的配制

(1)考马斯亮蓝溶液配制:称取0.001g考马斯亮蓝,溶于50 ml 90%乙醇中,加入100 ml 85%(W/V)的磷酸(不懂),85%是磷酸的质量分数,买回来时直接就是85%的磷酸,加入100ml就行。再用蒸馏水定容到1L,贮放在棕色瓶中,此溶液在常温下可放置1个月。

(2)100μg/ml牛血清蛋白(BSA)标准溶液:称取25mg BSA加水溶解后定容至100 ml,再从中吸取40ml用蒸馏水定容至100 ml(也可取10mg BSA定容至100ml即为100μg/ml标准BSA溶液)。

2、样品可溶性蛋白含量的测定

(1)样品可溶性蛋白含量测定:称取鲜样0.5g, 用5ml蒸馏水或磷酸缓冲液研磨提取。吸取样品提取液1.0Ml,放入具塞试管中(每个样品设置两个重复),加入5Ml考马斯亮蓝G-250溶液,充分混合,放置2Min后在595nM下比色,记录吸光值,并通过标准曲线查得蛋白质含量。调零管是用蒸馏水

样品中蛋白质的含量(Mg/g)=C×VT/(V1×FW×1000)(2-2) 式中C:查标准曲线值(μg);VT:提取液总体积(Ml); FW:样品鲜重(g); V1:测定时加样量(Ml)。

我就测这五个所以帮下我谢谢。